研究团队首先改造了人源尿嘧啶糖基化酶（UNG）的两个突变体，获得了两种高活性的DNA糖基化酶，分别作用于胞嘧啶碱基的CDG4和胸腺嘧啶碱基的TDG3。随后，研究团队将这两种DNA糖基化酶与nCas9（Cas9，D10A）融合，构建了CDG4-nCas9和TDG3-nCas9两种碱基编辑器，用于在大肠杆菌中进行C-to-A和T-to-A的编辑。实验结果显示，这两种碱基编辑器在大肠杆菌中的编辑效率最高分别达到58.7%和54.3%。

研究团队针对Homo sapiens密码子优化版本的CDG4-nCas9和TDG3-nCas9，在HEK293T细胞中实现了C-to-G和T-to-G的颠换编辑，编辑效率分别达到38.8%和48.7%。这两种编辑器的脱靶效果低于常用的胞嘧啶碱基编辑器（BE4max）和糖基化酶碱基编辑器（CGBEs）。研究团队将这两个编辑器命名为DAF-CBE和DAF-TBE，在优化后成功实现了人诱导多功能干细胞（hiPSC）高效编辑。

与现有的引导编辑器或糖基化酶碱基编辑器相比，DAF-BEs具有相当的编辑效率、更小的尺寸和更低的脱靶率，扩展了碱基编辑器的编辑类型，为工业菌株铸造和生物医药等领域相关研究提供了新的技术工具。